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mAbs | TriMab平台实现条件性双靶点T细胞衔接器设计

mAbs | TriMab平台实现条件性双靶点T细胞衔接器设计
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该研究开发了一种基于TriMab的条件性双靶点T细胞衔接器,通过调节结合亲和力和免疫突触形成机制,显著提高治疗指数,为实体瘤治疗提供了新的解决方案。

 

文献概述
本文《Improving dual targeting selectivity in T-cell engagers via synapse-gated and affinity-tuned trispecific antibody design》,发表于mAbs杂志,回顾并总结了利用三特异性抗体(TriMab)实现T细胞衔接器的条件性双靶点识别,从而提高实体瘤治疗选择性的策略。文章指出,传统T细胞衔接器在治疗实体瘤方面受限于靶向特异性,容易引发非肿瘤靶向毒性,进而限制其治疗指数。该研究通过引入一个非活性锚定臂(如抗ROR1)和一个亲和力调节的活性臂(如抗EGFR),结合抗CD3结构,实现AND门控的靶向机制,仅在双阳性细胞上形成有效的免疫突触,从而提高选择性并降低毒性。

背景知识
T细胞衔接器(TCEs)是一种重要的免疫治疗药物,能够将患者的T细胞重定向以攻击癌细胞。然而,在实体瘤治疗中,由于缺乏肿瘤特异性抗原,传统TCEs常常对正常组织产生毒性,限制其临床应用。为解决这一问题,研究团队开发了TriMab技术,通过双靶点识别机制提高特异性,同时维持单克隆抗体(mAb)样式的药代动力学特性。研究中使用的锚定臂(如抗ROR1)和活性臂(如抗EGFR)均经过亲和力优化,确保仅在双阳性细胞上激活T细胞,从而实现AND门控机制。此外,研究还验证了该方法在不同靶点组合中的通用性,例如HER2/EGFR TriMab,进一步证明其广泛适用性。该研究为双靶点T细胞衔接器的工程化提供了系统性策略,并为提高实体瘤治疗的安全性和有效性奠定了基础。

 

全人源化抗体小鼠模型,支持肿瘤、自身免疫疾病等治疗性抗体开发,具备高亲和力、低免疫原性,适用于单克隆抗体、纳米抗体筛选。

 

研究方法与实验
研究团队采用DuetMab平台构建TriMab分子,其包含三个不同的抗原结合片段(Fab):一个高亲和力锚定臂(如抗ROR1),一个亲和力降低的活性臂(如抗EGFR[v1-v3]),以及一个T细胞招募臂(抗CD3)。通过引入KiH突变(knob-into-hole)和静电导向突变(electrostatic steering mutations)促进重链和轻链的正确配对,同时在CH3结构域引入L234F、L235E、P331S突变以降低Fc介导的免疫效应功能。研究使用流式细胞术、生物层干涉测量(BLI)和共聚焦成像等方法评估分子结合特性和免疫突触形成情况,并在小鼠异种移植模型中测试抗肿瘤活性和药代动力学。

关键结论与观点

  • TriMab分子设计通过引入高亲和锚定臂和低亲和活性臂,实现了T细胞的AND门控激活,仅在双阳性细胞上诱导免疫突触形成。
  • 在体外实验中,ROR1/EGFR[v3] TriMab对NCI-H358细胞表现出高达500倍的靶向选择性,而对ROR1敲除细胞无显著毒性。
  • 在小鼠异种移植模型中,TriMab表现出良好的抗肿瘤活性,同时在健康组织上几乎无毒性,验证了其体内选择性。
  • TriMab分子在人源化FcRn小鼠中表现出mAb样药代动力学,半衰期为4.2–5.8天,表明其具备良好的可开发性。
  • 通过更换锚定臂(如抗HER2),研究进一步验证了TriMab平台的通用性,显示该设计可适用于多种双靶点组合。

研究意义与展望
该研究提供了一种通用的双靶点T细胞衔接器设计策略,为提高实体瘤治疗的安全性提供了新思路。未来,该平台可扩展至更多靶点组合,并在临床前模型中进一步评估其安全性和有效性。此外,TriMab的分子工程策略可为下一代T细胞衔接器的开发提供范式,特别是在个性化癌症免疫治疗中具有广泛应用潜力。

 

构建稳定且高效的基因编辑动物模型,适用于基因功能、肿瘤机制、代谢疾病及神经退行性疾病研究,提供快速、精准的KO/CKO小鼠服务,支持IND申报与药效评价。

 

结语
本研究成功构建并验证了TriMab技术在T细胞衔接器中的应用,该方法通过结合亲和力调节与免疫突触控制,实现了双靶点依赖的T细胞激活,显著提高了对实体瘤的靶向选择性并降低毒性。研究结果表明,TriMab具备良好的药代动力学和开发性,适用于多种肿瘤抗原组合。未来,该平台有望为癌症免疫治疗提供更安全、更有效的T细胞衔接器设计范式,尤其在针对缺乏肿瘤特异性抗原的实体瘤中具有重要应用前景。

 

文献来源:
Peng Zhao, John Schardt, Chi-I Chiang, Even Walseng, and Yariv Mazor. Improving dual targeting selectivity in T-cell engagers via synapse-gated and affinity-tuned trispecific antibody design. mAbs.